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細胞克隆實驗原理及實驗方法

 更新時間:2024-10-08 點擊量:203

細胞克隆形成實驗是用來檢測細胞增殖能力、侵襲性、對殺傷因素敏感性等項目的重要技術(shù)方法。

一、實驗原理

接種細胞后,只有同時具有貼壁和增殖活力的細胞才會形成克隆。克隆形成率反映細胞的獨立生存能力的強弱,用于評價細胞群體依賴性和增殖能力。克隆形成率與接種密度有一定關(guān)系,在進行測定時需要將接種的單個細胞分散為懸液,并直接接種在培養(yǎng)皿中進行持續(xù)一周以上的培養(yǎng),并在此期間進行檢查。當(dāng)出現(xiàn)新的、由單個原始生長出來的完整幾何結(jié)構(gòu)時,則可以停止培養(yǎng)過程。

克隆形成依據(jù)采用的培養(yǎng)介質(zhì)的不同,分為平板克隆和軟瓊脂克隆兩類。

二、實驗方法

1. 平板克隆實驗6孔板為例

1將處于對數(shù)生長期的細胞胰酶消化后,wanquan培養(yǎng)基(基礎(chǔ)培養(yǎng)基+10%胎牛血清)重懸成細胞懸液,并計數(shù);

2細胞接種:于6孔板培養(yǎng)板中各實驗組接種400-1,000個細胞/孔(根據(jù)細胞生長情況確定,一般為700個細胞/孔);

3繼續(xù)培養(yǎng)到14天或絕大多數(shù)單個克隆中細胞數(shù)大于50為止,中途每隔3天進行換液并觀察細胞狀態(tài);

4克隆完成后,在顯微鏡下對細胞進行拍照,然后PBS洗滌1次,每孔加入1 mL 4%多聚甲醛固定30-60 minPBS洗滌1次;

5每孔加入結(jié)晶紫染液1ml,染細胞10-20 min

6PBS 洗滌細胞數(shù)次,晾干,數(shù)碼相機拍照(分別對整個六孔板及每個孔進行單獨拍照)。

2. 軟瓊脂克隆實驗

1配制1.2% 0.7%瓊脂,高壓滅菌后,維持在42℃中使其不會凝固;

21.2% 瓊脂與培養(yǎng)基混合,鋪入6孔板作為下層膠,每孔1.5ml37°C孵育30 min使之凝固;

3將制備好的單細胞懸液與0.7%瓊脂充分混勻,加入6孔板作為上層膠,每孔1.5ml。待其凝固后,再在上面加入培養(yǎng)基,每3天更換一次;

4根據(jù)細胞的生長速度培養(yǎng)2~3周后顯微鏡下觀察克隆大小,與平板克隆一樣,每個克隆>50個細胞,顯微鏡拍照。若拍整個孔,每孔加入200μl氯化硝基四氮唑藍(NBT)染色,37°C過夜,拍照。

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